糖原含量试剂盒说明书
2024-3-6 5:00:43发布次查看发布人:
货号:yc1131 规格:100管/96样
糖原含量试剂盒说明书
微量法
正式测定前务必取2-3个预期差异较大的样本做预测定
测定意义:
糖原是由葡萄糖单位构成的高分子多糖,是糖的主要的储存形式之一,主要贮存在肝和肌肉中作为备用能量,分别称为肝糖原和肌糖原。肝糖原可调节血糖浓度,当血糖升高时可在肝脏合成糖原,血糖降低时,肝糖原则分解为葡萄糖以补充血糖。因此,肝糖原对维持血糖的相对平衡十分重要。肌糖原是肌肉中糖的储存形式,在剧烈运动消耗大量血糖时,肌糖原不能直接分解成血糖,必须先分解产生乳酸,随血液循环到肝脏,通过糖异生转变为肝糖原或葡萄糖。
测定原理:
蒽酮法。利用强碱性提取液提取糖原,在强酸性条件下利用蒽酮显色剂测定糖原含量。
需自备的仪器和用品:
可见分光光度计/酶标仪、水浴锅、可调式移液器、微量石英比色皿/96 孔板、浓硫酸(不允许快递)和蒸馏水。
试剂的组成和配制:
提取液:液体 100ml×1 瓶,4℃保存;
试剂一:0.1mg/ml 的葡萄糖标准液 10ml×1 瓶,4℃保存;
试剂二:粉剂×1 瓶, 4℃保存;
糖原提取:
1﹑细胞或细菌:收集500~1000万细菌或细胞到离心管内,离心后弃上清;加入0.75ml提取液超声波破碎细菌或细胞(功率20%或200w,超声3s,间隔10s,重复30次);转移至10ml试管中,95℃水浴20min(盖紧,防止水分散失),隔5min振摇试管1次,使充分混匀;取出试管冷却后,用蒸馏水定容到5ml,混匀,8000g 25℃离心10min,取上清液待测。
2﹑组织:称取0.1~0.2g样品,加入0.75ml 提取液充分匀浆;转移至10ml试管中;95℃水浴 20min(盖紧,防止水分散失),隔5min振摇试管1次,使充分混匀;待组织全部溶解后,取出试管冷却后,用蒸馏水定容到5ml,混匀,8000g 25℃离心10min,取上清液待测。
测定步骤
1、分光光度计或酶标仪预热30min以上,调节波长至620nm,蒸馏水调零。
2、调节水浴锅至95℃。
3、试剂二工作液的配制:在试剂二中倒入6ml蒸馏水,缓慢倒入24ml浓硫酸,充分溶解混匀后使用;用不完的试剂4℃保存一周;
4、加样表(在 ep 管中反应) :
试剂(μl)
空白管
标准管
测定管
待测样本
60
试剂一
60
蒸馏水
60
试剂二
240
240
240
混匀,置95℃水浴10min(盖紧,防止水分散失),冷却,取200μl转移至微量石英比色皿或 96孔板中,于620nm波长处,分别读取空白管、标准管和测定管吸光度,分别记为 a1、a2 和 a3。
注意:1、空白管和标准管只要测一次。
2、如果 a3-a1大于2,需要将样本用蒸馏水稀释,计算公式中乘以相应稀释倍数。
糖原含量的计算:
1、按照样本质量计算
糖原(mg/g 鲜重)=1.11×(c 标准×v1)×(a3-a1)÷(a2-a1)÷(w×v1÷v2)
= 0.555×(a3-a1)÷(a2-a1)÷w
2、按照蛋白质含量计算
糖原(mg/mg prot)=1.11×(c 标准×v1)×(a3-a1) ÷(a2-a1) ÷(v1×cpr)
=0.111×(a3-a1) ÷(a2-a1) ÷cpr
1.11:是此法测得葡萄糖含量换算为糖原含量的常数,即 111ug 糖原用蒽酮试剂显色相当于
100ug 葡萄糖用蒽酮所试剂显示的颜色;c 标准管:标准管浓度,0.1mg/ml;v1:加入反应体系中待测样本体积,0.06ml;v2:加入提取液体积,5ml; cpr:样本蛋白质浓度,mg/ml;w:样本鲜重,g。
注意:最低检测限为 10ng/g 鲜重或 0.1ng/ mg prot 。
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